肿瘤是当今时代威胁人类健康的重大疾病，每年都有大量病人死于癌症。在 所有癌症中，肺癌是发病率和死亡率都非常高的一种，且由于发病原因和病理特 征的复杂性，目前为止，针对肺癌的预防和治疗，尚未有特效药。因此，寻找高 效低毒的抗肿瘤特别是抗肺癌的药物迫在眉睫。

海洋中有丰富的微生物资源，这些微生物能产生大量结构新型，生物活性强 的天然产物，这些天然产物与陆源天然产物有很大差别，为未来新药的研发提供 了有效充足的先导化合物。海洋生物多糖是近年来研究的热点，在抗炎症抗病毒 抗肿瘤等多方面显示出良好的生物活性，此外，海洋生物多糖还广泛应用于食品 化妆品以及辅助医疗等方面，表明海洋生物多糖具有良好的生物安全性。因此， 近年来，以海洋多糖为基础的抗肿瘤药物研发吸引了越来越多人的关注。

本研究从一株海洋芽孢杆菌中分离得到一种新型胞外多糖 EPS11，并对该多 糖的性质结构抗肿瘤活性和抗肿瘤机理进行了初步探究。研究表明，EPS11 为一 种杂多糖，重均分子量为 22.3 kDa。单糖组成分析的结果表明，EPS11 由甘露糖， 氨基葡萄糖，鼠李糖，半乳糖醛酸，葡萄糖和木糖组成，其摩尔比为 1:2.58:0.68:0.13:3.09:1.41。

EPS11 具有明显的癌细胞毒性，且对肺癌细胞作用尤为显著。当给药浓度为 90 nmol/L 时，在作用 48 h 的情况下，EPS11 对 A549、H1299 和 H460 细胞的抑 制率分别高达 80%，67%和 47%。在对 EPS11 抑癌机理的探究中，我们发现 EPS11 能显著抑制多种肺癌细胞的黏附，蛋白质组学的研究也表明，EPS11 能下调细胞 中多种黏附相关的蛋白质的表达。扫描电镜的结果进一步证明，EPS11 的处理能 破坏多种肺癌细胞表面的突出结构。且胞外突出结构的破坏程度与细胞的黏附能 力表现出一定的正相关性，这表明这一结构在细胞的黏附过程中起非常重要的作 用。一般细胞与基质之间失去黏附后会发生失巢凋亡，而部分癌细胞对失巢凋亡 的抵抗是其转移的基础。而本研究中，EPS11 不仅影响细胞的黏附还抑制 A549 细胞对失巢凋亡的抵抗。βⅢ-Tubulin 是肺癌细胞抵抗失巢凋亡的关键蛋白。本 摘 要 II 研究证明，EPS11 能时间和剂量依赖地抑制 βⅢ-Tubulin 相关的细胞通路。其具 体表现为，（1）EPS11 在转录和翻译水平上抑制了 βⅢ-tubulin 的表达；（2）EPS11 降低了 βⅢ-Tubulin 下游 AKT 的活化。

在体内实验中，EPS11 也显示出良好的抑瘤活性，在 2.24 μmol/kg/2d 的给药 条件下能显著抑制小鼠体内 A549 细胞移植瘤的生长，抑瘤率为 42.2%，同时无 明显副作用。

综上所述，我们认为 EPS11 通过破坏黏附相关的蛋白和结构抑制癌细胞的 黏附，同时通过抑制 βⅢ-Tubulin 介导的细胞凋亡抵抗来诱导癌细胞发生凋亡。 这表明 EPS11 可能是一种有潜力的靶肺癌治疗的天然产物。

目 录

摘 要... I

ABSTRACT. III

第一章 绪论... 1

1.1 引言... 1

1.2肺癌基础研究概况... 1

1.2.1 肺癌的流行病学概况... 1

1.2.2 临床诊断与治疗... 2

1.2.3 癌细胞的黏附、转移与耐药性... 3

1.3 海洋生物资源在抗肿瘤药物开发中的应用... 6

1.3.1 海洋微生物资源的多样性... 6

1.3.2 海洋天然产物的及研究进展... 7

1.4 多糖在抗肿瘤研究中的应用... 9

1.4.1 多糖抗肿瘤的研究进展... 10

1.4.2 海洋生物多糖的研究进展... 11

1.5 本研究的目的及意义... 13

第二章 实验材料与方法... 14

2.1 实验材料... 14

2.1.1实验生物... 14

2.1.2 培养基... 14

2.1.3 实验试剂... 14

2.1.4 实验设备... 16

2.2 实验方法... 17

2.2.1 细胞培养... 17

2.2.2 活性菌株的筛选... 17

2.2.3 目的菌株的鉴定... 17

2.2.4 发酵条件的优化... 18

2.2.5 EPS11的分离纯化... 18

2.2.6 EPS11理化性质的确定... 19

2.2.7 EPS11对不同细胞生长的抑制... 20

2.2.8 EPS11对细胞形态及黏附的影响... 21

2.2.9 EPS11诱导A549细胞发生凋亡... 23

2.2.10 EPS11对βⅢ-tubulin基因转录的影响... 24

2.2.11 EPS11对βⅢ-Tubulin蛋白表达的影响... 26

2.2.12 EPS11对小鼠体内移植瘤的作用... 28

第三章 结果与讨论... 31

3.1 菌株的筛选与鉴定... 31

3.2 活性物质的发酵优化及性质确定... 33

3.2.1 发酵条件的优化... 33

3.2.2活性物质类型的确定... 34

3.3 活性物质的分离纯化... 35

3.4 EPS11的性质及结构鉴定... 36

3.4.1 EPS11中小分子杂质的确定... 36

3.4.2 EPS11中活性成分性质的确定... 37

3.4.3 EPS11的红外光谱... 39

3.4.4 EPS11的重均分子量... 39

3.4.5 EPS11的单糖组成... 40

3.5 EPS11对癌细胞的抑制作用... 40

3.6 EPS11对细胞行为的影响... 41

3.6.1 EPS11破坏癌细胞的黏附... 41

3.6.2 EPS11抑制黏附相关蛋白的表达... 43

3.7 EPS11对细胞结构及运动能力的影响... 44

3.7.1 EPS11破坏癌细胞表面结构... 44

3.7.2 EPS11抑制A549细胞的迁移能力... 45

3.8 EPS11诱导细胞凋亡... 46

3.9 EPS11抑制A549细胞中βⅢ-Tubulin通路的活化... 48

3.10 EPS11抑制小鼠体内A549移植瘤... 50

3.11 小结与讨论... 52

第四章 结论与展望... 55

4.1 结论... 55

4.2 不足与展望... 55

参考文献... 57

作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果... 67

作者简历... 67

已发表（或正式接收）的学术论文... 67

参与的研究项目... 67

致 谢... 68